Новые возбудители заболеваний респираторного тракта у иммунокомпрометированных пациентов (обзор литературы)
- Авторы: Исматуллин Д.Д.1, Золотов М.О.1, Лямин А.В.1, Никитина Т.Р.1, Железнова Е.А.1, Жестков А.В.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
- Выпуск: Том 4, № 3 (2019)
- Страницы: 19-24
- Раздел: Инфекционные болезни
- Статья опубликована: 15.09.2019
- URL: https://innoscience.ru/2500-1388/article/view/43744
- DOI: https://doi.org/10.35693/2500-1388-2019-4-3-19-24
- ID: 43744
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Поражение органов дыхания занимает одну из лидирующих позиций в структуре всех заболеваний взрослого и детского населения нашей страны. Отчасти это связано с увеличением количества пациентов с первичными и вторичными иммунодефицитами, больных с анатомическими аномалиями дыхательных путей и другими заболеваниями бронхолегочной системы.
Классическими возбудителями, вызывающими болезни органов дыхания бактериальной природы, как правило, являются: Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas spp., Staphylococcus spp., а также другие представители семейства Enterobacteriacae. Но с каждым годом в научной литературе описывается все больше микроорганизмов – возбудителей инфекционных заболеваний различной локализации у человека, клиническое значение которых долгое время оставалось малоизученным. К таким патогенам относят представителей крупных семейств Corynebacteriaceae, Mycobacteriaceae, Nocardiaceae.
Клиницистам необходимо учитывать возможные нарушения в функционировании иммунной системы у пациентов с поражением органов дыхания, а также широкий спектр возбудителей, поражающих респираторный тракт. Для успешного ведения таких больных важно тесное взаимодействие врачей-пульмонологов, бактериологов и аллергологов-иммунологов.
Ключевые слова
Полный текст
ИДС – иммунодефицитное состояние; ПИД – первичный иммунодефицит; ВИД – вторичный иммунодефицит; ХОБЛ – хроническая обструктивная болезнь легких; ПЦР – полимеразная цепная реакция.
ВВЕДЕНИЕ
В настоящее время поражение органов дыхания занимает одну из лидирующих позиций в структуре всех заболеваний взрослого и детского населения нашей страны. Отчасти это связано с увеличением количества пациентов с первичными и вторичными иммунодефицитами, особенно ВИЧ-инфицированных, больных с анатомическими аномалиями дыхательных путей и другими заболеваниями бронхолегочной системы. Отдельно можно выделить группу пациентов, которые находятся на иммуносупрессивной терапии после трансплантации органов. Нарушения работы иммунной системы неизбежно приводят к изменению спектра возбудителей, вызывающих поражение различных органов и систем организма человека, особенно респираторного тракта.
К основным функциям иммунной системы относятся распознавание генетически чужеродных веществ (экзо- или эндогенного происхождения), их удаление из макроорганизма и запоминание антигенов. За счет этого обеспечивается поддержание гомеостаза.
Иммунную защиту человека формируют два механизма: врожденный и адаптивный. К врожденному относятся: факторы естественной защиты (кожа, слизистые оболочки), клеточные (макрофаги, дендритные клетки, натуральные киллеры и др.) и гуморальные (компоненты комплемента, белки острой фазы воспаления, интерфероны и др.). К адаптивным факторам относятся лимфоциты (Т-, В-лимфоциты и их субпопуляции). Отличительной особенностью адаптивного иммунитета является способность к специфичному распознаванию антигенов и формированию иммунологической памяти [1].
При возникновении генетических аномалий или под воздействием неблагоприятных эндо- или экзогенных факторов могут возникать нарушения в работе иммунной системы. К основным проявлениям патологии иммунной системы относятся иммунодефицитные состояния (ИДС), аллергические, аутоиммунные и лимфопролиферативные заболевания [2].
Иммунодефицит – это снижение количественных показателей, а также функциональной активности основных компонентов иммунной системы, которое ведет к нарушению защиты организма от патогенов и проявляется в повышении заболеваемости различными инфекциями [3].
Среди ИДС выделяют первичные иммунодефицитные состояния (ПИД), вторичные иммунодефициты (ВИД) и «физиологические ИДС», связанные, например, с возрастными изменениями в иммунной системе [4].
Одним из основных признаков ИДС являются рецидивирующие инфекционные заболевания, которые характеризуются вялым течением, тяжело поддаются этиотропному лечению. Кроме того, локализация и спектр возбудителей могут меняться в широком диапазоне [5, 6, 7].
Впервые ПИД был описан в 1952 году американским педиатром О. Брутоном [8]. В настоящее время выделяют более 200 различных первичных иммунодефицитов, а их частота встречаемости в человеческой популяции варьируется. Так, частота селективного дефицита IgA достигает 1:500, однако для большинства ПИД этот показатель составляет 1:50 000 – 1:100 000 [9]. Первичные иммунодефициты возникают в результате генетического нарушения в звеньях иммунной системы. Могут возникать поражения гуморального или клеточного звена иммунитета, дефект фагоцитоза, компонентов системы комплемента. Для ПИД характерны стойкие нарушения функции поврежденного компонента иммунитета, отмечающиеся стабильностью и постоянными изменениями при проведении лабораторных исследований.
Классическими возбудителями, вызывающими болезни органов дыхания бактериальной природы, как правило, являются: Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas spp., Staphylococcus spp., а также другие представители семейства Enterobacteriacae. И чаще всего именно эти микроорганизмы являются основной мишенью при назначении антимикробной химиотерапии.
ОПИСАНИЕ В ЛИТЕРАТУРЕ МИКРООРГАНИЗМОВ – ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ
С каждым годом в научной литературе описывается все больше микроорганизмов – возбудителей инфекционных заболеваний различной локализации у человека, клиническое значение которых долгое время оставалось малоизученным. В частности, ежегодно увеличивается доля в структуре заболеваний верхних и нижних дыхательных отделов респираторной системы медленно и быстрорастущих микроорганизмов из порядка Actinomycetales.
К этим микроорганизмам можно отнести представителей крупных семейств Corynebacteriaceae, Mycobacteriaceae, Nocardiaceae [10], среди которых отдельно выделяют представителей родов, имеющих определенную особенность клеточной стенки. Она состоит в высоком содержании миколовых кислот (хемотип IV), во многом определяющих особенности патогенеза этих микроорганизмов при попадании в макроорганизм, а именно – кислотоустойчивость, и как следствие защиту от фагоцитоза. Наиболее развита данная особенность строения у представителей родов Gordonia, Mycobacterium, Nocardia, Rhodococcus, Tsukamurella.
Род Tsukamurella представлен неподвижными, грамположительными, палочковидными, споронеобразующими, облигатными аэробами. Эти микроорганизмы довольно часто меняли свое название, после того как впервые был выделен в 1941 году Steinhaus из мицетом и яичников клопа [11]. После этого неоднократно выделялись при микробиологическом исследовании почвы, ила и различных органов членистоногих [12].
Окончательное название род приобрел, после того как японские микробиологи Tsukamura вместе с Mizuno выделили новый микроорганизм Gordona aurantiaca из образцов мокроты пациента с туберкулезом и хронической обструктивной болезнью легких [13]. Уже в 1982 году Tsukamura и Kawakami описали первый случай заболевания легких у человека, вызванного G. Aurantiaca [14].
В течение 70-х и 80-х годов G. aurantiaca была переименована в Rhodococcus aurantiacus в связи с тем, что эти бактерии обладают схожими морфологическими и культуральными особенностями и являются близкородственными. Но после того как в 1988 году Collins и соавторы расшифровали последовательность 16S рРНК, было предложено переименование G. aurantiaca в Tsukamurella aurantiaca [15]. В настоящее время у пациентов чаще всего выделяются следующие представители рода Tsukamurella: T. paurometabola, T. wratislaviensis, T. pulmonis, T. inchonensis [12, 16]. Наиболее часто бактерии этого рода вызывают катетер-ассоциированную бактериемию у пациентов с патологией кроветворной системы, злокачественными новообразованиями и у пациентов, которым проводятся постоянные внутривенные процедуры [17, 18].
Описаны случаи выделения Tsukamurella у пациентов с менингитами и абсцессами мозга, перитонитами, кератитами и конъюнктивитами, при кожных инфекциях различной локализации, средних отитах и поражениях верхних и нижних дыхательных путей [19, 20, 21]. Также стоит отметить, что были описаны случаи коинфекции T. tyrosinosolvens и микобактерии, вызывающей туберкулез M. bovis, при этом вызванная Tsukamurella инфекция легких имеет схожую клиническую картину с туберкулезом. В литературе также указаны случаи инфекции при наличии протезов коленного сустава и при наличии кардиостимуляторов [22, 23].
С внедрением и широким применением инновационных методов лабораторной и инструментальной диагностики количество новых случаев выделения бактерий из рода Tsukamurella будет только увеличиваться.
Rhodococcus – род аэробных микроорганизмов, споронеобразующих, неподвижных грамположительных бактерий, находящихся в близкородственных связях с микобактериями и коринебактериями. Большинство авторов относят вызванные ими инфекции к зоонозам.
Чаще всего инфицирование представителями данного рода бактерий происходит воздушно-пылевым путем при их попадании на слизистые оболочки верхних дыхательных путей из почвы, воды, при вдыхании аэрозоля или при тесном контакте с животными [24]. Наиболее подвержены заражению работники сельского хозяйства, которые находятся в постоянном контакте с перечисленными факторами передачи.
Впервые бактерии рода Rhodococcus были выделены в 1923 году у овец с пневмонией, после этого были зарегистрированы частые случаи выделения микроорганизма у многих травоядных животных, особенно у жеребят. В 1967 году отмечен первый случай заболевания человека, который находился на терапии системными кортикостероидами [25]. В последние годы чаще регистрируются случаи инфицирования у иммунокомпрометированных пациентов.
Род Rhodococcus включает следующие патогенные для человека виды: R. equi, R. erythropolis, R. gordoniae, R. fascians (R. luteus) и R. rhodochrous complex. В большинстве случаев выделения родококков неоднократно были идентифицированы как R. equi, и в литературе чаще описаны случаи заболевания именно этим видом бактерий.
Что касается клинического значения, наиболее распространен описанный вид микроорганизмов у иммунокомпрометированных пациентов, больных с онкологическими заболеваниями легких, страдающих гематологическими заболеваниями, саркоидозом, и после трансплантации [26, 27]. Наиболее часто инфекции, вызванные родококками, клинически протекают в форме пневмонии, но из-за особенностей и сложностей микробиологической идентификации из биоматериала возбудитель выделяется достаточно редко. Помимо этого, авторами указаны случаи раневых инфекций, катетер-ассоциированного сепсиса и абсцессов различной локализации [28]. Довольно важно отметить, что были зарегистрированы случаи передачи R. equi от человека к человеку у двух ВИЧ-инфицированных мужчин, живущих вместе [29].
Ежегодно зарубежными авторами как в Европе, так и в Америке описываются случаи выделения и идентификации из клинического материала бактерий из рода Nocardia. Эти микроорганизмы были впервые выделены в 1888 году ветеринаром Э. Нокардом из материала от крупного рогатого скота. Далее ученый Trevisan дал выделенному изоляту видовое название N. farcinica. После этого в 1954 году N. farcinica стала одним из типовых видов для этого рода. Впоследствии длительный период времени происходило довольно большое количество таксономических изменений в связи со структурными особенностями бактерий, а именно из-за высокого содержания длинноцепочечных миколовых кислот Nocardia и схожестью с родом Mycobacterium. Также определенная «путаница» возникала из-за схожих свойств с грибами, при микроскопии и окраске по Граму демонстрируется характерное разветвление бактериальной клетки.
Довольно много разногласий было в связи с различной антимикробной чувствительностью внутри вида N. asteroides, что в дальнейшем дало основание для разделения на 6 групп. После появления 16S рРНК секвенирования были выделены следующие таксономические единицы: N. abscessus, N. Brevicatena / N.paucivorans, N. nova complex, N. transvalensis complex, N. farcinica и N. cyriacigeorgica. На данный момент род Nocardia представлен более 80 видами бактерий, многие из которых могут вызывать те или иные инфекционные поражения органов и тканей. Нокардии представлены грамположительными бациллами с характерной разветвленной нитевидной формой, не образующие спор и капсулы, неподвижные, все представители обладают выраженной кислотоустойчивостью из-за высокого содержания в клеточной стенке миколовых кислот [30].
Инфицирование человека нокардиями может происходить воздушно-капельным (легочный нокардиоз – пневмония, абсцесс легкого и поражения полости рта) или контактным путем – через порез или поврежденную кожу (кожный нокардиоз – целлюлит, язвы). Кроме того, возможна диссеминация возбудителя из первичного очага инфекции в мозг, почки, суставы, сердце, глаза и кости [31, 32]. До 70% случаев заражения нокардиями приходится на легочные поражения. Также возможны внутрибольничные вспышки нокардиозов у катетеризованных пациентов или у больных в послеоперационном периоде [33].
Инфекции, вызываемые Nocardia spp., обычно встречаются у лиц с иммунодефицитами, в том числе у ВИЧ-инфицированных, имеющих легочные поражения, страдающих хроническим алкоголизмом, у пациентов после трансплантации органов и находящихся на постоянной системной кортикостероидной терапии. В развитых странах, в том числе в Соединенных Штатах Америки, было отмечено, что более 60% нокардиоза у человека встречается у людей с ослабленным иммунитетом, при этом мужчины более подвержены инфицированию, чем женщины (3:1) [34, 35, 36, 37]. В 13-летнем анализе наиболее распространенных состояний, связанных с нокардиозом легких, было выделено несколько основных групп риска: лечение стероидами (64,5%), состояние после трансплантации органов (29%), ХОБЛ (23%), ВИЧ-инфекция (19%) и употребление алкоголя (6,5%) [37].
Симптомы нокардиоза неспецифичны, заболевание характеризуется хроническим течением [38]. Изменения на рентгенограмме грудной клетки могут варьировать от уплотнений и полостных узлов до масс и интерстициальных поражений, чаще в верхних долях легких [39]. Трудности в постановке диагноза нокардиоза вызывают отсутствие какого-либо пато-гномоничного, клинического или рентгенологического признака, а также определенные сложности в микробиологической диагностике. Поздняя постановка диагноза приводит к задержке терапии, что является предиктором более высокой смертности у этих пациентов [40, 41].
Представители Nocardia spp. чувствительны к большинству антибиотиков группы â-лактамов, в последнее время отмечается рост резистентности микроорганизма к противомикробным препаратам [41]. Линезолид, ампициллин, эритромицин могут быть использованы для лечения нокардиоза. Проведенное в США десятилетнее ретроспективное исследование чувствительности различных видов нокардий к антибиотикам показало, что более 50% изолятов были устойчивы к бисептолу. В этом исследовании было указано, что необходимо проводить комбинированную эмпирическую терапию, включающую бисептол, цефтриаксон и имипенем, до получения результатов о чувствительности микроорганизма [42].
Gordonia spp. является грамположительным, каталазоположительным, аэробным, нокардиоформным микроорганизмом из группы актиномицет, имеет слабые кислотоустойчивые свойства [43]. Естественной средой обитания для гордоний являются почва и вода [44]. Бактерия также была выделена из слюны домашних и диких собак [45]. У госпитализированных пациентов она чаще всего встречается на фоне внутрисосудистых катетер-ассоциированных инфекций.
В роде Gordonia насчитывается около 35 достоверно выделенных видов, среди которых наиболее часто встречаемыми при поражении человека являются: G. aichiensis, G. araii, G. bronchialis, G. otitidis, G. polyisoprenivorans, G. rubripertincta, G. sputi и G. terrae. G. bronchialis была впервые идентифицирована в образцах мокроты, полученных от пациентов с легочными поражениями. Другие клинические штаммы в Японии были выделены из плевральной жидкости, кожи и гноя. Также G. bronchialis вызывала бактериемию у пациента с секвестрированным легким и рецидивирующим абсцессом молочной железы у иммунокомпрометированной пациентки [46]. Кроме того, G. bronchialis была выделена из раны грудины у больных, перенесших операцию по шунтированию коронарных артерий [47].
Инфекции, вызванные гордониями, довольно редки, и о них в первую очередь сообщают как о хирургических инфекциях. В связи с этим клинический опыт, который может дать рекомендации по оптимальной антибактериальной терапии, отсутствует [48]. Антибиотики, использовавшиеся в ранее опубликованных случаях, включали имипенем, гентамицин, ципрофлоксацин, ванкомицин и цефтриаксон. Исследование, проведенное в Японии, охарактеризовало 13 изолятов G. bronchialis, в основном из легочных образцов, полученных в период между 1998 и 2008 годами. Было показано, что выделенные штаммы чувствительны к карбапенемам и аминогликозидам, имеют переменную устойчивость к ванкомицину и цефалоспоринам третьего поколения. Однако, учитывая небольшое количество изолятов, данное исследование не может использоваться в качестве окончательного руководства для эмпирического лечения. Тем не менее недавние сообщения показали, что микроорганизмы рода Gordonia были выделены из раны грудины, опухолей и из плеврального выпота [49].
Gordonia spp. имеет много общих черт с Nocardia spp. или Rhodococcus spp., что определяет сложности в микробиологической идентификации данного возбудителя. Возбудитель требует всестороннего морфологического и биохимического тестирования или применения современных методов идентификации, таких как MALDI-ToF масс-спектрометрия. Нокардии относятся к медленно растущим бактериям, период роста составляет минимум 4 дня [49]. Кроме масс-спектрометрии для правильной видовой идентификации возможно использование ПЦР и секвенирования.
Необходимо отметить, что важным событием в научной и практической микробиологии стала разработка нового метода идентификации микроорганизмов с использованием времяпролетной матрично-активированной лазерной десорбции/ионизации масс-спектрометрии (MALDI-ToF). Метод, позволяющий быстро и точно идентифицировать как «рутинные», так и нетривиальные, редкие и атипичные микроорганизмы, такие так Nocardia, Gordonia, Tsukamurella, Rhodococcus. На данный момент происходит широкое внедрение масс-спектрометров различного производства в практику бактериологических лабораторий в России и по всему миру.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
В настоящее время отмечается увеличение количества иммунокомпрометированных пациентов. Вследствие этого ежегодно, помимо глубоко изученных «классических» патогенов, появляются все новые и новые микроорганизмы, играющие важную роль в патологическом процессе бронхолегочной системы. Им следует уделять пристальное внимание, тем более что современные методы микробиологической диагностики позволяют качественно и своевременно выделять редкие и атипичные микроорганизмы и проводить их идентификацию.
Об авторах
Д. Д. Исматуллин
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
Email: m.o.zolotov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4283-907X
ассистент кафедры общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии
Россия, СамараМаксим Олегович Золотов
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: m.o.zolotov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4806-050X
очный аспирант кафедры общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии
Россия, СамараА. В. Лямин
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
Email: m.o.zolotov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5905-1895
к.м.н., доцент кафедры общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии
Россия, СамараТ. Р. Никитина
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
Email: m.o.zolotov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7424-1796
к.м.н., доцент кафедры общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии
Россия, СамараЕ. А. Железнова
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
Email: m.o.zolotov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-0931-2038
к.м.н., доцент кафедры общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии
Россия, СамараА. В. Жестков
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
Email: m.o.zolotov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3960-830X
д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии
Россия, СамараСписок литературы
- Zhestkov AV, Protasov AD, Kozlova OS, et al. Infectiology. Fundamentals of immunodiagnostics and immunoprophylaxis of infectious diseases. Samara, 2019. (In Russ.) [Жестков А.В., Протасов А.Д., Козлова О.С. и др. Учение об инфекции. Основы иммунодиагностики и иммунопрофилактики инфекционных заболеваний. Самара, 2019].
- Luss LV, Martynov-Radushinskiy AA. Secondary immune deficiency. Do we always need immunomodulators? Meditsinskiy sovet. 2014;(2):40–45. (In Russ.) [Лусс Л.В., Мартынов-Радушинский А.А. Вторичная иммунная недостаточность. Всегда ли нужны иммуномодуляторы? Медицинский совет. 2014;(2):40–45].
- Khaitov RM. Immunology. M.: GEOTAR-Media, 2011. (In Russ.) [Хаитов Р.М. Иммунология. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011].
- Khaitov RM ed. Immunology and allergology. Diagnosis and treatment algorithms. M.: GEOTAR-Media, 2003. (In Russ.) [Иммунопатология и аллергология. Алгоритмы диагностики и лечения. Под ред. Хаитова Р.М. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2003].
- Vorob'yova AA, Bykova AS, Karaulova AV. Immunology and allergology. M., Prakticheskaya meditsina, 2006. (In Russ.) [Иммунология и аллергология. Под ред. Воробьёва А.А., Быкова А.С., Караулова А.В. М.: Практическая медицина, 2006].
- Luss LV, Martynov-Radushinsky AA. Role and place of immunomodulating therapy inflammatory diseases occurring against the background of secondary immune deficiency. Meditsinskiy sovet. 2013;(11):78–81. (In Russ.) [Лусс Л.В., Мартынов-Радушинский А.А. Роль и место иммуномодулирующей терапии в лечении инфекционно-воспалительных заболеваний, протекающих на фоне вторичной иммунной недостаточности. Медицинский совет. 2013;(11):78–81].
- Yarilin AA. Immunology. M.: GEOTAR-Media, 2010. (In Russ.) [Ярилин А.А. Иммунология. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2010].
- Bruton OC. Agammaglobulinemia. Pediatrics. 1952;(9):722–726.
- Karzakova LM, Muchukova OM, Rasskazova NL. Primary and secondary immunodeficiency states. Zdravookhraneniye Chuvashii. 2008;(2):72–79. (In Russ.) [Карзакова Л.М., Мучукова О.М., Рассказова Н.Л. Первичные и вторичные иммунодефицитные состояния. Здравоохранение Чувашии. 2008;(2):72–79].
- Dworkin M, Falkow S, Rosenberg E, Schleifer KH, Stackebrandt E. The prokaryotes. Volume 3: Archaea. Bacteria: firmicutes, actinomycetes. New York: Springer, 2006.
- Steinhaus EA. A study of the bacteria associated with thirty species of insects. J Bacteriol. 1941;42(6):757–790.
- McNeil MM, Brown JM. The medically important aerobic actinomycetes: epidemiology and microbiology. Clinical microbiology reviews. 1994;7(3):357–417. doi: 10.1128/cmr.7.3.357
- Tsukamura M. Proposal of a new genus, Gordona, for slightly acid-fast organisms occurring in sputa of patients with pulmonary disease and in soil. J Gen Microbiol. 1971;68(1):15–26. doi: 10.1099/00221287-68-1-15
- Tsukamura M, Kawakami K. Lung infection caused by Gordona aurantiaca (Rhodococcus aurantiacus). Journal of clinical microbiology. 1982;16(4):604–607.
- Collins MD, Smida J, Dorsch M, Stackebrandt E. Tsukamurella gen. nov, harboring Corynebacterium paurometabolum and Rhodococcus aurantiacus. Int J Syst Bacteriol. 1988;38(4):385–391. doi: 10.1099/00207713-38-4-385
- Clausen C, Wallis CK. Bacteremia caused by Tsukamurella species. Clin Microbiol Newslett. 1994;16(1):6–8.
- Shapiro CL, Haft RF, Gantz NM, et al. Tsukamurella paurometabola: a novel pathogen causing catheter-related bacteremia in patients with cancer. Clin Infect Dis. 1992:14(1):200–203.
- Lai KK. A cancer patient with central venous catheter-related sepsis caused by Tsukamurella paurometabola (Gordona aurantiaca). Clin Infect Dis. 1993;17(2):285–287. doi: 10.1093/clinids/17.2.285-a
- Shaer A, Gadegbeku C. Tsukamurella peritonitis associated with continuous ambulatory peritoneal dialysis. Clin Nephrol. 2001;56:241–246.
- Woo PC, Fong AH, Ngan A, et al. First report of Tsukamurella keratitis: association between T. tyrosinosolvens and T. pulmonis and ophthalmologic infections. J Clin Microbiol. 2009;47(6):1953–1956. doi: 10.1128/JCM.00424-09
- Lcaide ML, Espinoza L, Abbo L. Cavitary pneumonia secondary to Tsukamurella in an AIDS patient. First case and a review of the literature. J Infect. 2004;49(1):17–19. doi: 10.1016/S0163-4453(03)00139-7
- Chen CH, Lee CT, Chang TC. Tsukamurella tyrosinosolvens bacteremia with coinfection of Mycobacterium bovis pneumonia: case report and literature review. Springer Plus. 2016;5(1):2033. doi: 10.1186/s40064-016-3707-y
- Yassin A, Rainey F, Burghardt J, et al. Tsukamurella tyrosinosolvens sp. nov. Int J Syst Bacteriol. 1997;47(3):607–614. doi: 10.1099/00207713-47-3-607
- Vazquez-Boland J. Rhodococcus equi: the many facets of a pathogenic actinomycete. Vet Microbiol. 2013;167(1–2):9–33. doi: 10.1016/j.vetmic.2013.06.016
- Golub B, Falk G, Spink W. Lung abscess due to Corynebacterium equi. Report of first human infection. Ann Intern Med. 1967;66(6):1174–1177. doi: 10.7326/0003-4819-66-6-1174
- Yamshchikov A, Schuetz A, Lyon G. Rhodococcus equi infection. Lancet Infect Dis. 2010;10(5):350–359. doi: 10.1016/S1473-3099(10)70068-2
- Nishi S, Valentine G, Duncan S. Emerging bacterial, fungal, and viral respiratory infections in transplantation. Infect Dis Clin North Am. 2010;24(3):541–555.
- Kedlaya I, Ing M, Wong S. Rhodococcus equi infections in immunocompetent hosts: case report and review. Clin Infect Dis. 2001;32(3):39–46. doi: 10.1086/318520
- Arlotti M, Zoboli G, Moscatelli G, et al. Rhodococcus equi infection in HIV-positive subjects: a retrospective analysis of 24 cases. Scand J Infect Dis. 1996;28(5):463–467. doi: 10.3109/00365549609037941
- McNeil M, Brown M. The medically important aerobic actinomycetes: epidemiology and microbiology. Clin Microbiol Rev. 1994;7(3):357–417. doi: 10.1128/cmr.7.3.357
- Piau C, Kerjouan M, Le Mouel M, et al. First case of disseminated infection with Nocardia cerradoensis in a human. J Clin Microbiol. 2015;53(3):1034–1037. doi: 10.1128/JCM.02979-14
- Flateau C, Jurado V, Lemaître N, et al. First case of cerebral abscess due to a novel nocardia species in an immunocompromised patient. J Clin Microbiol. 2013;51(2):696–700. doi: 10.1128/JCM.00762-12
- Al Akhrass F, Hachem R, Mohamed J, et al. Central venous catheter-associated Nocardia bacteremia in cancer patients. Emerg Infect Dis. 2011;17(9):1651–1658. doi: 10.3201/eid1709.101810
- Wilson JW. Nocardiosis. Updates and Clinical Overview. Mayo Clin Proc. 2012;87(4):403–407. doi: 10.1016/j.mayocp.2011.11.016
- Canterino J, Paniz-Mondolfi A, Brown-Elliott B, et al. Nocardia thailandica pulmonary nocardiosis in a post-solid organ transplant patient. J Clin Microbiol. 2015;53(11):3686–90. doi: 10.1128/JCM.00959-15
- Alavi Darazam I, Shamaei M, Mobarhan M, et al. Nocardiosis: risk factors, clinical characteristics and outcome. Iran Red Crescent Med J. 2013;15(5):436–9. doi: 10.5812/ircmj.2384
- Zia K, Nafees T, Faizan M, Salam O, et al. Ten year review of pulmonary nocardiosis: a series of 55 cases. Сureus. 2019;11(5):4759. doi: 10.7759/cureus.4759
- Hızel K, Çağglar K, Cabadak H, Külah C. Pulmonary nocardiosis in a non-Hodgkin's lymphoma patient. Infection. 2002;30:243–245. doi: 10.1007/s15010-002-2102-5
- Yaşar Z, Acat M, Onaran H. An unusual case of pulmonary nocardiosis in immunocompetent patient. Case Rep Pulmonol. 2014;2014:963482. doi: 10.1155/2014/963482
- Agterof MJ, Van der Bruggen T, Tersmette M. Nocardiosis: a case series and a mini review of clinical and microbiological features. Neth J Med. 2007,65(6):199–202.
- Kandi V. Human nocardia infections: a review of pulmonary nocardiosis. Cureus. 2015 15;7(8):304. doi: 10.7759/cureus.304
- Uhde KB, Pathak S, McCullum I Jr, et al. Antimicrobial-resistant nocardia isolates, United States, 1995-2004. Clin Infect Dis. 2010;51(12):1445–1448. doi: 10.1086/657399
- Arenskötter M, Bröker D, Steinbüchel A. Biology of the metabolically diverse genus Gordonia. Appl Environ Microbiol. 2004;70:3195–3204. doi: 10.1128/AEM.70.6.3195-3204.2004
- Shen FT, Goodfellow M, Jones AL, et al. Gordonia soli sp. nov., a novel actinomycete isolated from soil. Int J Syst Evol Microbiol. 2006;56(11):2597–601. doi: 10.1099/ijs.0.64492-0
- Richet HM, Craven PC, Brown JM, et al. A cluster of rhodococcus (gordona) bronchialis sternal-wound infections after coronary-artery bypass surgery. N Engl J Med. 1991;324:104–109. doi: 10.1056/NEJM199101103240206
- Sng LH, Koh TH, Toney SR, et al. Bacteremia caused by gordonia bronchialis in a patient with sequestrated lung. J Clin Microbiol. 2004;42(6):2870–2871. doi: 10.1128/JCM.42.6.2870-2871.2004
- Akrami K, Coletta J, Mehta S, Fierer J. Gordonia sternal wound infection treated with ceftaroline: case report and literature review. JMM Case Rep. 2017;4(9):e005113. doi: 10.1099/jmmcr.0.005113
- Wright SN, Gerry JS, Busowski MT, et al. Gordonia bronchialis sternal wound infection in 3 patients following open-heart surgery: intraoperative transmission from a healthcare worker. Infect Control Hosp Epidemiol. 2012;33(12):1238–1241. doi: 10.1086/668441
- Ambesh P, Kapoor A, Kazmi DH, et al. Sternal osteomyelitis by gordonia bronchialis in an immunocompetent patient after open heart surgery. Ann Card Anaesth. 2019;22(2):221–224. doi: 10.4103/aca.ACA_125_18
Дополнительные файлы
