Cравнительная антибиотикорезистентность изолятов S. aureus, выделенных в хирургических и терапевтических отделениях стационаров
- Авторы: Жильцов И.В.1
-
Учреждения:
- УО «Витебский государственный медицинский университет»
- Выпуск: Том 5, № 2 (2020)
- Страницы: 83-87
- Раздел: Инфекционные болезни
- Статья опубликована: 15.06.2020
- URL: https://innoscience.ru/2500-1388/article/view/43795
- DOI: https://doi.org/10.35693/2500-1388-2020-5-2-83-87
- ID: 43795
Цитировать
Аннотация
Цель – выявить особенности устойчивости к бета-лактамным антибиотикам клинических изолятов S. aureus, выделенных в стационарах различного профиля, а также скорректировать рекомендации по эмпирической этиотропной терапии, назначаемой пациентам со стафилококковыми инфекциями.
Материал и методы. Объектом исследования являются клинические изоляты S. aureus, выделенные от пациентов, госпитализированных в Витебскую областную клиническую инфекционную больницу («терапевтические» изоляты, n=117) и отделение гнойной хирургии и ОРИТ Витебской областной клинической больницы («хирургические» изоляты, n=111) в 2016–17 гг. Методы исследования антибиотикорезистентности клинических изолятов S. aureus: диско-диффузионный метод, метод определения бета-лактамазной активности бактериальной взвеси с помощью тест-системы «БиоЛактам».
Результаты. Оказалось, что 80,6% терапевтических изолятов и 73,2% хирургических изолятов устойчивы к пенициллинам 1 поколения. К ингибитор-защищенным бета-лактамам были устойчивы 5,4% терапевтических изолятов и 34% хирургических изолятов. К цефалоспоринам 3 поколения были устойчивы 36,8% хирургических изолятов и ни одного терапевтического изолята. Среди терапевтических изолятов не было выявлено ни одного MRSA, а среди хирургических изолятов распространенность MRSA составила 30,5%. 93,3% терапевтических изолятов S. aureus не проявляли бета-лактамазной активности. Среди хирургических изолятов таких оказалось всего 34,4%. Выявлены прямые корреляции средней силы между уровнями бета-лактамазной активности изолятов S. aureus, длительностью госпитализации и продолжительностью лихорадочного периода, а также между выявлением MRSA и длительностью госпитализации, продолжительностью лихорадки и диарейного синдрома.
Заключение. Для эмпирической антибактериальной терапии терапевтических инфекций, вызванных S. aureus, рекомендовано использование ингибитор-защищенных пенициллинов и цефалоспоринов 3 поколения. Для эмпирической антибактериальной терапии стафилококковых инфекций хирургических и реанимационных отделений необходимы антибиотики резерва с избирательной антистафилококковой активностью, например, гликопептиды или оксазолидиноны.
Полный текст
ОРИТ – отделение реанимации и интенсивной терапии;
ВОКИБ – Витебская областная клиническая инфекционная больница;
ВОКБ – Витебская областная клиническая больница.
ВВЕДЕНИЕ
Золотистый стафилококк (S. aureus) – один из наиболее известных патогенных микроорганизмов, вызывающих различные заболевания человека. Помимо этого, данный микроорганизм – один из наиболее частых возбудителей разнообразных госпитальных инфекций, ответственный в первую очередь за развитие многочисленных осложнений инвазивных медицинских вмешательств. Так, в США с инфекцией S. aureus связано до 500 000 заболеваний и до 50 000 смертей ежегодно [1, 2].
S. aureusизвестен разнообразными механизмами резистентности к бета-лактамным антибиотикам. В частности, он способен продуцировать классические бета-лактамазы типов A-D [3]. Помимо этого, золотистый стафилококк может приобретать модификации пенициллин-связывающих белков (PBP2a), существенно снижающие их сродство к бета-лактамам; при этом формируется так называемая метициллин-резистентность, проявляющаяся тотальной резистентностью соответствующего штамма ко всем антибиотикам бета-лактамного ряда и выявляемая по наличию устойчивости к индикаторным антибиотикам – метициллину и оксациллину [4]. Доля золотистых стафилококков, обладающих метициллин-резистентностью (т.н. MRSA), составляет от 17 до 40% [5].
При этом соотношение разных механизмов устойчивости S. aureus к бета-лактамным антибиотикам может существенно изменяться от страны к стране в зависимости от принятой там тактики эмпирического назначения антибиотиков при гнойно-воспалительных заболеваниях. Имеет значение и происхождение изолятов S. aureus – при внегоспитальных инфекциях доля MRSA значительно ниже, чем при госпитальных. Так, частота выявления внегоспитальных пневмоний, вызванных MRSA, составляет в среднем 2,4% [6], в то время как частота регистрации госпитальных пневмоний, вызванных MRSA, составляет до 10,5% от общего количества таких пневмоний (до 20–30% госпитальных пневмоний вызваны S. aureus, причем до 32–37% из общего количества выделяемых изолятов золотистого стафилококка являются метициллин-резистентными [7, 8]). При этом приведенные цифры являются очень усредненными – данные, приводимые в различных исследованиях, сильно разнятся. Создается впечатление, что процент MRSA от общего количества клинических изолятов S. aureus – переменная величина со многими неизвестными, и автоматически экстраполировать на определенный регион данные, полученные для других, даже соседних регионов, некорректно.
Помимо этого, практически все исследования, посвященные особенностям антибиотикорезистентности S. aureus, – зарубежные; большая же часть отечественных исследований по данной проблеме выполнена в 90-х – начале 2000-х годов, ввиду чего приведенная там информация устарела. При этом знание преобладающего механизма антибиотикорезистентности госпитальных и внегоспитальных штаммов S. aureus, выделяемых в определенном регионе, критически важно для определения локальной тактики эмпирической этиотропной терапии, проводимой пациентам с подозрением на стафилококковые инфекции в соответствующих условиях [9].
ЦЕЛЬ
Выявить особенности устойчивости к антибиотикам бета-лактамного ряда у клинических изолятов S. aureus, выделенных в стационарах различного профиля, а также скорректировать рекомендации по эмпирической этиотропной терапии, назначаемой пациентам со стафилококковыми инфекциями.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Объект настоящего исследования – клинические изоляты S. aureus, выделенные от пациентов, находившихся на стационарном лечении в Витебской областной клинической инфекционной больнице (ВОКИБ) (т.н. «терапевтические» изоляты, n=117), а также в отделении гнойной хирургии и отделении реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ) Витебской областной клинической больницы (ВОКБ) (т.н. «хирургические» изоляты, n=111) в 2016–2017 гг.
Необходимо отметить, что разница между госпитальными и внегоспитальными изолятами S. aureus является в большой мере условной, поскольку ни лабораторные, ни эпидемиологические исследования не позволяют со стопроцентной уверенностью установить госпитальное либо внегоспитальное происхождение того или иного изолята. Фактически госпитальный патоген вызывает госпитальные инфекции и именно этим принципиально отличается от внегоспитального, другие же отличия не являются определяющими. Госпитальными же называют любые инфекции, развившиеся в связи с госпитализацией либо посещением учреждения здравоохранения с целью лечения в срок не менее чем через 48 часов с момента госпитализации либо посещения [10]. При этом необходимо иметь в виду возможность колонизации кожных покровов и слизистых оболочек пациента госпитальными штаммами S. aureus в ходе предыдущей госпитализации; в этом случае де-факто внегоспитальные стафилококковые инфекции могут в действительности быть вызваны госпитальными штаммами золотистого стафилококка [11]. Наоборот, стафилококковые инфекции, формально являющиеся госпитальными, могут быть связаны с аутоинфицированием внегоспитальной флорой, персистирующей на кожных покровах и слизистых госпитализированных пациентов [12].
Изоляты S. aureus из ВОКИБ были получены от пациентов преимущественно детского возраста с острыми инфекционными гастроэнтеритами, энтероколитами и инфекциями верхних дыхательных путей формально внегоспитального происхождения. Изоляты S. aureus из отделения гнойной хирургии и ОРИТ ВОКБ были выделены от пациентов с инфекционными осложнениями оперативных вмешательств и инвазивных манипуляций, развившимися непосредственно в стационаре и по формальным критериям являющимися госпитальными. Тем не менее ни в первом, ни во втором случае нельзя утверждать с уверенностью, что изоляты золотистого стафилококка, выделенные в инфекционной больнице, однозначно являются внегоспитальными, равно как и нельзя однозначно утверждать, что изоляты золотистого стафилококка, выделенные у пациентов с хирургическими госпитальными инфекциями, несомненно являются госпитальными – по указанным выше причинам. Именно поэтому мы условно обозначили изоляты S. aureus, выделенные от пациентов ВОКИБ, «терапевтическими», а изоляты, полученные из ВОКБ, – «хирургическими», имея в виду, что в первом случае они с высокой вероятностью являются внегоспитальными, а во втором – госпитальными.
Для выделения изолятов патогенных микроорганизмов из биологического материала пациентов и оценки их свойств использовались общепринятые методы микробиологического исследования; в частности, для определения профиля антибиотикоустойчивости выделенных изолятов использовался диск-диффузионный анализ, выполнявшийся в соответствии с действующими международными (CLSI) рекомендациями [13].
Для количественной детекции бета-лактамазной активности чистых культур микроорганизмов, об-условленной продукцией бета-лактамаз всех классов, мы использовали спектрофотометрическую методику, основанную на регистрации распада бета-лактамной связи нитроцефина [14]. Данная методика была реализована при помощи тест-системы «БиоЛактам» (ООО «Сивитал», РБ). Как известно, â-лактамная связь в молекуле нитроцефина разрушается под воздействием всех известных бета-лактамаз, при этом максимум поглощения образовавшегося продукта реакции меняется с 390 нм на 486 нм, что делает возможной спектрофотометрическую оценку уровня бета-лактамазной активности по определению степени убыли субстрата реакции [15].
В настоящем исследовании оценивалась устойчивость микроорганизмов к пенициллинам 1 поколения (бензилпенициллин, ампициллин), ингибитор-защищенным бета-лактамам (амоксициллин/клавуланат, пиперациллин/тазобактам) и цефалоспоринам 3 поколения (цефотаксим, цефтазидим), а также к оксациллину. Параллельно оценивалась способность выделенных изолятов S. aureus к продукции бета-лактамаз при помощи тест-системы «БиоЛактам». В том случае, если бактерии оказывались устойчивыми к пенициллинам 1 поколения, но чувствительными к ингибитор-защищенным бета-лактамам, а также продуцировали бета-лактамазы, считалось, что их резистентность была обусловлена продукцией бета-лактамаз класса А. Если бактерии оказывались резистентными к цефалоспоринам 3 поколения на фоне доказанной продукции ими бета-лактамаз, то считалось, что они продуцируют бета-лактамазы расширенного спектра (БЛРС). Если же анализ показывал, что изучаемый изолят устойчив ко всем использованным в исследовании бета-лактамам, включая оксациллин, но при этом не продуцирует бета-лактамазы, то считалось, что данный вариант S. aureus имеет модифицированные ПСБ, т.е. является MRSA. Нечастые случаи, когда анализируемые изоляты S. aureus оказывались устойчивыми к оксациллину, но чувствительными к каким-либо еще антибиотикам бета-лактамного ряда, расценивались как лабораторные артефакты и исключались из дальнейшего анализа.
Статистическая обработка результатов исследования включала в себя вычисление центральной тенденции и разброса количественных параметров, частот качественных параметров, 95% доверительных интервалов для всех вычисленных статистических показателей, вычисление коэффициентов корреляции (ñ Спирмена), анализ статистической значимости различий (U-тест Манна – Уитни для количественных признаков, тест по критерию хи-квадрат для качественных признаков) [8]. В ходе статистической обработки использовались только непараметрические методы анализа, ввиду чего проверка нормальности распределения непрерывных количественных признаков не проводилась. Для расчетов использовались программы Statistica 10.0 и MedCalc 15.6.
РЕЗУЛЬТАТЫ
80,6% (95% ДИ: 71,1–90,1) «терапевтических» изолятов S. aureus, изученных в настоящем исследовании, было устойчиво к пенициллинам (ампициллину, бензилпенициллину). Среди «хирургических» изолятов доля устойчивых к данным антибиотикам составила 73,2% (95% ДИ: 63,6–82,8). Разница между данными показателями оказалась статистически незначимой (тест по критерию Chi-square, р=0,18).
5,4% (95% ДИ: 1,2–9,6) «терапевтических» изолятов золотистого стафилококка оказалось устойчиво к амоксициллину/клавуланату. 31,4% (95% ДИ: 16,1–46,8) «хирургических» изолятов было устойчиво к амоксициллину/клавуланату, 34,0% (95% ДИ: 20,5–47,6) – к пиперациллину/тазобактаму. Разница в уровнях резистентности «терапевтических» и «хирургических» изолятов S. aureus к ингибитор-защищенным бета-лактамам оказалась статистически значимой (тест по критерию Chi-square, р<0,0001).
Не было выявлено ни одного случая резистентности изученных «терапевтических» изолятов золотистого стафилококка к цефотаксиму и цефтазидиму. При этом к указанным антибиотикам оказалось устойчиво 36,8% (95% ДИ: 26,0–47,7) «хирургических» изолятов. Разница между уровнями резистентности «терапевтических» и «хирургических» изолятов к цефалоспоринам 3 поколения также была статистически значимой (тест по критерию Chi-square, р<0,0001).
Среди «терапевтических» изолятов S. aureus не было выявлено ни одного, обладающего метициллинорезистентностью. Среди «хирургических» изолятов частота встречаемости таковых составила 30,5% (95% ДИ: 20,5–40,5). Разница между указанными частотами встречаемости MRSA является статистически значимой (тест по критерию Chi-square, р<0,0001).
Продукция бета-лактамаз отсутствовала у 93,3% «терапевтических» изолятов золотистого стафилококка; вообще среди них было выявлено только два изолята, обладающих относительно невысокой бета-лактамазной активностью (1,7%; 95% ДИ: 0–4,06). Среди «хирургических» изолятов только 34,4% (17,9–50,8) не являлись продуцентами бета-лактамаз. Высокая бета-лактамазная активность была выявлена у 6 «хирургических» изолятов (5,4%; 95% ДИ: 1,2–9,6), средний уровень продукции бета-лактамаз наблюдался у 14 изолятов (12,6%; 95% ДИ: 6,4–18,8). Разница между частотой продукции бета-лактамаз «терапевтическими» и «хирургическими» изолятами S. aureus является статистически значимой (тест по критерию Chi-square, р=0,0008). Корреляционный анализ (Спирмена) выявил корреляцию средней силы (R=0,538; р=0,0006) между «хирургическим» происхождением изолятов и их способностью продуцировать бета-лактамазы.
Среди прочих корреляционных зависимостей, выявленных в ходе настоящего исследования, обращают на себя внимание прямые корреляции средней силы между уровнями бета-лактамазной активности изолятов S. aureus и длительностью госпитализации (R=0,447; р=0,005), а также общей продолжительностью лихорадочного периода (R=0,434; р=0,013).
Пациенты отделения гнойной хирургии и ОРИТ ВОКБ по сравнению с пациентами ВОКИБ дольше находились на стационарном лечении (R=0,261; р=0,027), у них была более выраженная анемия (R=0,245; р=0,008), более высокие показатели СОЭ (R=0,348; р=0,024), более длительный лихорадочный период (R=0,411; р=0,017), среди выделенных от них клинических изолятов S. aureus чаще встречались MRSA (R=0,612; р<0,0001).
Помимо этого, были выявлены слабые и средней силы прямые корреляции между фактом выделения MRSA и длительностью госпитализации пациентов (R=0,353; р=0,00008), а также между общей продолжительностью лихорадки (R=0,375; р=0,0002) и длительностью диарейного синдрома (R=0,334; р=0,005). Указанные корреляции были выявлены при анализе всей изученной выборки пациентов без разделения на «терапевтических» и «хирургических».
ОБСУЖДЕНИЕ
Анализ полученных результатов позволяет констатировать, что условно внегоспитальные («терапевтические») изоляты S. aureus обладают существенно более высокой чувствительностью к антибиотикам бета-лактамного ряда, чем условно госпитальные («хирургические»), причем это касается как пенициллинов и аминопенициллинов, так и цефалоспоринов 3 поколения, ингибитор-защищенных бета-лактамов, частоты встречаемости MRSA и штаммов-продуцентов бета-лактамаз. Указанные результаты являются в целом ожидаемыми и хорошо соответствуют общемировым трендам [17, 18, 19]. Тем не менее данные о конкретных уровнях локальной устойчивости клинических изолятов S. aureus различного происхождения («терапевтического» и «хирургического») к бета-лактамам, равно как и данные о локальном соотношении механизмов этой устойчивости (MRSA / продукция бета-лактамаз), являются новыми и представляют определенный клинический интерес.
В частности, из полученных результатов следует, что частота встречаемости MRSA среди изученных изолятов S. aureus существенно уступает частоте встречаемости продуцентов бета-лактамаз, причем указанная разница статистически значима (тест по критерию Chi-square, р<0,0001). При этом и продукция бета-лактамаз, и метициллинорезистентность наблюдаются практически исключительно среди «хирургических» изолятов.
Судя по результатам корреляционного анализа, уровень продукции бета-лактамаз клиническими изолятами S. aureus может быть прямо пропорционален тяжести течения заболеваний у соответствующих пациентов. Тем не менее здесь может иметь место логическая ошибка, т.к. высокий уровень продукции бета-лактамаз гораздо чаще отмечался у «хирургических» изолятов золотистого стафилококка, а они были выделены у пациентов гнойного хирургического отделения со вторичными инфекционными осложнениями оперативных вмешательств, а также у пациентов ОРИТ, у которых заболевания, естественно, протекали существенно тяжелее, чем у пациентов инфекционного стационара.
Обращает на себя внимание высокий уровень резистентности «хирургических» изолятов золотистого стафилококка к ингибитор-защищенным бета-лактамам (31–34%), цефалоспоринам 3 поколения (≈37%), а также высокая частота встречаемости метициллинорезистентности у данных изолятов (30,5%) по сравнению с очень низкими (околонулевыми) значениями соответствующих показателей у «терапевтических» изолятов, что ставит под сомнение возможность применения соответствующих антибиотиков в качестве стартовой эмпирической антибиотикотерапии для лечения стафилококковых инфекций у пациентов гнойных хирургических и реанимационных отделений. Складывается впечатление, что в соответствующих случаях этиотропная терапия должна начинаться сразу с назначения резервных антистафилококковых препаратов, таких как гликопептиды, циклические липопептиды или оксазолидиноны.
ВЫВОДЫ
Клинические изоляты S. aureus (в первую очередь – выделенные в хирургических и реанимационных отделениях стационаров) способны как продуцировать бета-лактамазы, так и проявлять метициллинорезистентность, причем продукция бета-лактамаз наблюдается в 2,2 раза чаще, чем устойчивость к метициллину/оксациллину.
Учитывая высокий уровень (73–81%) резистентности как «терапевтических», так и «хирургических» изолятов S. aureus к пенициллинам, включая аминопенициллины, использование указанных антибиотиков для стартовой эмпирической этиотропной терапии стафилококковых инфекций представляется нецелесообразным.
С учетом высокой чувствительности «терапевтических» изолятов S. aureus к цефалоспоринам 3 поколения (100%) представляется целесообразным использовать именно эти антибиотики в качестве стартовых при назначении эмпирической этиотропной терапии пациентам с явно внегоспитальными стафилококковыми инфекциями. В качестве альтернативных препаратов можно использовать ингибитор-защищенные бета-лактамы, к которым чувствительно 94,6% «терапевтических» изолятов.
Принимая во внимание высокий уровень резистентности «хирургических» изолятов S. aureus к ингибитор-защищенным бета-лактамам (31–34%), цефалоспоринам 3 поколения (36,8%), а также высокую вероятность наличия метициллинорезистентности у таких изолятов (30,5%), представляется обоснованным начинать эмпирическую этиотропную терапию стафилококковых инфекций явно госпитального происхождения сразу с назначения резервных антистафилококковых препаратов, таких как гликопептиды, циклические липопептиды или оксазолидиноны.
Об авторах
Иван Викторович Жильцов
УО «Витебский государственный медицинский университет»
Автор, ответственный за переписку.
Email: zhyltsou@tut.by
д.м.н., доцент, заведующий кафедрой персонализированной и доказательной медицины ФПК и ПК
Белоруссия, ВитебскСписок литературы
- Schlecht LM, Peters BM, Krom BP, et al. Systemic Staphylococcus aureus infection mediated by Candida albicans hyphal invasion of mucosal tissue. Microbiology. 2015;161(1):168–181. doi: 10.1099/mic.0.083485-0
- Shahriar M, Shahid S, Katha KK, et el. Vancomycin Sensitivity of Clinical Isolates of Staphylococcus aureus from Patients in Dhaka City, Bangladesh. Bangladesh Pharmaceutical Journal. 2012;15(2):159–163. doi: 10.3329/bpj.v15i2.12582
- Fuda CCS, Fisher JF, Mobashery S. -Lactam resistance in Staphylococcus aureus: the adaptive resistance of a plastic genome. Cellular and Molecular Life Sciences. 2005;62(22):2617–33. doi: 10.1007/s00018-005-5148-6
- Pantosti A, Sanchini A, Monaco M. Mechanisms of antibiotic resistance in Staphylococcus aureus. Future Microbiology. 2007;2(3):323-334. doi: 10.2217/17460913.2.3.323
- Rozova LV, Godovyh NV, Astashova OA. The frequency of isolation of methicillin-resistant Staphylococcus aureus and their sensitivity to antibacterial preparations. Mezhdunarodnyj zhurnal prikladnyh i fundamental'nyh issledovanij. 2016;1(2):180–182. (In Russ.). [Розова Л.В., Годовых Н.В., Асташова О.А. Частота выделения метициллинорезистентных Staphylococcus aureus и их чувствительность к антибактериальным препаратам. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2016;1(2):180–182].
- Gregory JM, Anusha K, Rachel JG, et al. Prevalence of Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus as an Etiology of Community-Acquired Pneumonia. Clinical Infectious Diseases. 2012; 54(8):1126–1133. doi: 10.1093/cid/cis022
- Meyer E, Schwab F, Gastmeier P. Nosocomial methicillin resistant Staphylococcus aureus pneumonia – epidemiology and trends based on data of a network of 586 German ICUs (2005–2009). European Journal of Medical Research. 2010;15(12):514–524. doi: 10.1186/2047-783x-15-12-514
- Zabaznoska L, Ilieva LJ, Markovski V, et al. Hospital Acquired MRSA Pneumonia. International Journal of Infectious Diseases. 2008;12(1):e237. doi: 10.1016/j.ijid.2008.05.592
- Schweizer ML, Furuno JP, Harris AD, et al. Empiric Antibiotic Therapy for Staphylococcus aureus Bacteremia May Not Reduce In-Hospital Mortality: A Retrospective Cohort Study. PLoS ONE. 2010;5(7):e11432. doi: 10.1371/journal.pone.0011432
- Kouchak F, Askarian M. Nosocomial Infections: The Definition Criteria. Iranian Journal of Medical Sciences. 2012;37(2):72–73. PMID: 23115435
- Polgreen PM, Herwaldt LA. Staphylococcus aureus colonization and nosocomial infections: Implications for prevention. Current Infectious Disease Reports. 2004;6(6):435–441. doi: 10.1007/s11908-004-0062-x
- Balasubramanian D, Harper L, Shopsin B, Torres VJ. Staphylococcus aureus pathogenesis in diverse host environments. Pathogens and Disease. 2017;75(1):ftx005. doi: 10.1093/femspd/ftx005
- Humphries RM, Ambler J, Mitchell SL, et al. CLSI Methods Development and Standardization Working Group Best Practices for Evaluation of Antimicrobial Susceptibility Tests. Journal of Clinical Microbiology. 2018;56(4):01934–17. doi: 10.1128/JCM.01934-17
- Cynthia O'Callaghan H, Morris A, Kirby SM, et al. Novel Method for Detection of -Lactamases by Using a Chromogenic Cephalosporin Substrate. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1972;1(4):283–288. doi: 10.1128/AAC.1.4.283
- Zhyltsou IV, Veremej IS, Semenov VM, Nebos'ko EL. The BioLactam test system is an effective tool for detecting bacterial resistant to beta-lactam antibiotics. Vestnik Vitebskogo gosudarstvennogo medicinskogo universiteta. 2011;10(4):98–104. (In Russ.). [Жильцов И.В., Веремей И.С., Семенов В.М., Небосько Е.Л. Тест-система «БиоЛактам» – эффективное средство для выявления бактерий, устойчивых к антибиотикам бета-лактамного ряда. Вестник Витебского государственного медицинского университета. 2011;10(4):98–104]. doi: 10.24412/Felo8Ulgh74
- Kirkwood BR, Sterne JAC. Essential medical statistics. Second edition. Blackwell Science, 2003:502 p. doi: 10.1002/sim.1961
- Fey PD, Said-Salim B, Rupp ME, et al. Comparative Molecular Analysis of Community- or Hospital-Acquired Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2003;47(1):196–203. doi: 10.1128/aac.47.1.196-203.2003
- Sakoulas G, Gold HS, Venkataraman L, et al. Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus: Comparison of Susceptibility Testing Methods and Analysis of mecA-Positive Susceptible Strains. Journal of Clinical Microbiology. 2001;39(11):3946–3951. doi: 10.1128/jcm.39.11.3946-3951.2001
- Vysakh PR, Jeya M. A comparative analysis of community acquired and hospital acquired methicillin resistant Staphylococcus aureus. Journal of Clinical and Diagnostic Research. 2013;7(7):1339–42. doi: 10.7860/JCDR/2013/5302.3139
Дополнительные файлы
